杜仲葉提取物的體外抗氧化作用 |
發(fā)布時間:2010-10-09 信息來源:admin 發(fā)布人:admin 點擊次數(shù):3463 |
劉靜 (陜西教育學(xué)院生命科學(xué)系,陜西西安710061) 摘要:通過測定杜仲葉提取物對02- 和·OH的清除率,對小鼠紅細(xì)胞氧化溶血的影響和對各臟器MDA生成的抑制率,評價杜仲葉提取物的體外抗氧化作用。實驗結(jié)果表明,杜仲葉提取物具有明顯的體外抗氧化作用。 關(guān)鍵詞:杜仲葉;體外抗氧化;自由基 杜仲(Eucommla ulmiodes Olives)為被子植物門杜仲科(Eucommiaceae)杜仲屬落葉喬木,是一種名貴藥材!渡褶r(nóng)本草經(jīng)》將其列為上品,它具有補(bǔ)中益氣、堅筋骨、強(qiáng)志、安胎……久服輕身耐老之功效。長期以來,人們都以杜仲皮入藥,近年來的研究表明 [1,2,3],杜仲葉與皮具有相似的化學(xué)成分和藥理作用,可代皮供藥用。為了開發(fā)利用這一天然資源,我們對杜仲葉的體外抗氧化作用進(jìn)行了實驗研究。 1 材料與方法 1.1 材料 杜仲葉:采自秦嶺山區(qū),提取液由陜西教育學(xué)院生命科學(xué)系生化實驗室制備。 1.2 動物 1月齡的ICR小鼠,體重20±2克,雌雄兼用。由陜西省中醫(yī)藥研究院實驗動物中心提供(陜醫(yī)動字08—004號)。 1.3 實驗方法 1.3.1 對02-的清除率的測定[4] 每支試管加入3mlTris—HC1緩沖液(pH8.2),0.1ml不同藥液或溶媒,25℃ ±0.5℃水浴平衡20min后,加入0.3ml7mmo1.L 的鄰苯三酚,準(zhǔn)確反應(yīng)4min,各加入lml lOmo1.L-1 HC1終止反應(yīng),420nm測A值,計算清除率。 1.3.2 對·OH清除率的測定[5] 用FeSO4+H2O2產(chǎn)生·OH,以·OH氧化水楊酸鈉所得產(chǎn)物的吸光值表示·OH的多少,吸光值越大,·OH越多。3ml反應(yīng)液中含0.15mmo1.L-1。FeSO4,6mmol-1.L H2O2,2mmo1.L-1 水楊酸鈉及不同濃度的藥物,最后加H202啟動反應(yīng),37℃反應(yīng)1h,測510nm吸光值,吸光值越低,清除·OH效果越好。 1.3.3 對小鼠紅細(xì)胞氧化溶血的影響[6] 小鼠眼眶取血分離紅細(xì)胞,生理鹽水洗3次后制成0.5%懸液。取紅細(xì)胞懸液lml,加不同濃度的杜仲葉提取液,最后加100mmo1.L H2O2混勻,37*℃溫浴1h,用生理鹽水稀釋5倍,lO00g離心10rain,取上清液于415nm 比色測定,以對照組為100%溶血,計算溶血度。 1.3.4 丙二醛(MDA)含量的測定 組織勻漿制備:用引頸法處死小鼠,迅速取其肝、心組織,冰浴下勻漿,制成5%的懸液。 肝亞細(xì)胞制備:肝組織于冰浴下以0.25mo1.L 蔗糖緩沖液制成10%勻漿,l000g離心10min,沉淀用預(yù)冷的0.25mo1.L 蔗糖緩沖液洗2次,合并上清液,以10000g離心20rain,沉淀用0.25mo1.L 的蔗糖緩沖液洗2次,合并上清液,所得沉淀即為純化的線粒體[7]。 MDA的測定[5]:取lml組織勻漿液或肝亞細(xì)胞懸液,加入不同濃度的杜仲葉提取物,再加入6mmo1.L-1。FeSO4100ul,最后加60mmo1.L-1H202 40ul。在37℃下,水浴1h后,加入15%TCA lml結(jié)束反應(yīng),再加入0.67%TBA lml,于沸水浴中顯色15min,冷卻后離心,測532nm吸光度,以吸光度表示MDA含量多少,吸光值越大,MDA含量越高。 2 結(jié)果與討論 進(jìn)行體外實驗可以排除體內(nèi)實驗的復(fù)雜性,如藥物在體內(nèi)的分解、代謝、吸收、轉(zhuǎn)化等,藥物與體內(nèi)物質(zhì)如抗氧化酶、微量元素等的相互作用,藥物有效成分的利用度等各種問題,從而能夠更為直接地觀察藥物的治療效果,為藥物的體內(nèi)實驗提供實驗依據(jù),對于闡明藥物的作用機(jī)制有一定幫助。 2.1 對02-的清除率 02-是活性氧的一種,是機(jī)體內(nèi)壽命最長的自由基,通常作為自由基鏈?zhǔn)椒磻?yīng)的引發(fā)劑,產(chǎn)生活性更強(qiáng)的自由基,在體內(nèi)由過氧化物歧化酶清除。如果體內(nèi)過氧化物歧化酶活力下降或02-產(chǎn)生過量都會給機(jī)體造成危害。本實驗通過鄰苯三酚自氧化產(chǎn)生02-,來觀察杜仲葉提取物在體外對02-有無抑制或清除作用,結(jié)果如表1所示。 由表1結(jié)果顯示,加藥組的A420nm值均低于對照組,表明杜仲葉提取物可以清除02-或使02-的生成減少,當(dāng)杜仲葉提取物的濃度達(dá)到8.00ug/ml時效果顯著。 2.2 對·OH的清除率 ·OH是氧化性極強(qiáng)的氧化劑,不僅是膜脂質(zhì)過氧化的罪魁禍?zhǔn)祝一直被認(rèn)為是引起DNA損傷的重要因素。本實驗測定杜仲葉提取物在體外對·OH有無抑制作用,結(jié)果如表2 所示。 表2結(jié)果顯示,杜仲葉提取物各劑量組的A510nm值均小于對照組,數(shù)據(jù)差異極顯著,說明杜仲葉提取物對·OH有良好的清除作用,且有一定的量效關(guān)系。 2.3 杜仲葉提取物對小鼠紅細(xì)胞溶血的影響 紅細(xì)胞是機(jī)體運輸O2和CO2的細(xì)胞,含有引發(fā)催化脂質(zhì)過氧化作用的物質(zhì)血紅蛋白,膜上又含有大量不飽合脂肪酸,因此容易受到氧化損傷。本實驗用H2O2誘導(dǎo)紅細(xì)胞氧化溶 血來研究杜仲葉提取物對紅細(xì)胞膜氧化損傷的抑制作用。結(jié)果如表3所示。 表3結(jié)果顯示,正常的紅細(xì)胞在體外溫育過程中有輕微的溶血現(xiàn)象,這與報道結(jié)果一致[8]。模型組與正常組有極顯著差異,說明H2O2可以誘導(dǎo)紅細(xì)胞的氧化溶血;加藥組低于模型組,差異顯著或極顯著,且呈一定的量效關(guān)系,說明杜仲葉提取物可以抑制紅細(xì)胞的氧化溶血。 2.4 杜仲葉提取物對小鼠心、肝勻漿及肝線粒體脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物生成的影響 MDA為脂質(zhì)過氧化產(chǎn)物,它可與含有游離氨基的蛋白質(zhì)、磷脂酰乙醇胺及核酸等進(jìn)行多次交聯(lián),連接成比原來大許多倍的大分子,致使膜蛋白變性,膜酶失活,膜受體失效,出現(xiàn)膜結(jié)構(gòu)的破壞,膜流動性下降,膜脆性和通透性的增加,導(dǎo)致生物膜結(jié)構(gòu)和功能的異常,影響機(jī)體的物質(zhì)代謝,能量代謝和信息傳遞,從而危及正常的生命活動。其生成的多少可以反映出組織細(xì)胞的受損程度。在生物體內(nèi)90%以上的氧分子在線粒體中被消耗,氧作為呼吸鏈的終電子受體參與產(chǎn)生ATP的氧化磷酸化反應(yīng),是維持生命的重要能量代謝過程,但是氧通過一系列化學(xué)反應(yīng)生成有害的氧自由基,造成細(xì)胞損傷并導(dǎo)致疾病和衰老。實驗證明線粒 體是細(xì)胞中產(chǎn)生活性氧的一個重要部位,CHANCE等[9] 證明在正常生理情況下約有2%的氧消耗于線粒體活性氧的產(chǎn)生,生成活性氧的前體是02和H2O2,它們是呼吸鏈底物端漏出的電子引起氧分子單電子還原生成的。本實驗用FeSO4和H2O2產(chǎn)生·OH來誘導(dǎo)組織脂質(zhì)過氧化,測定了杜仲葉提取物對小鼠心、肝勻漿及肝線粒體中MDA生成的影響,結(jié)果如表4、表5、表6所示。 表4、表5、表6顯示,模型組與正常組相比,MDA的生成量增加,數(shù)據(jù)差異極顯著,說明·OH可使小鼠心臟、肝臟及肝線粒體的脂質(zhì)過氧化反應(yīng)加速。加藥組與模型組相比MDA的含量顯著下降,數(shù)據(jù)差異顯著或極顯著,說明杜仲葉提取物可以有效抑制·OH所致的小鼠組織及肝亞細(xì)胞脂質(zhì)過氧化的發(fā)生,保護(hù)細(xì)胞膜的完整性,從而保護(hù)組織免受損傷,而且抑制率隨杜仲葉提取物濃度增加而提高。 [參考文獻(xiàn)] [1]王景祥.杜仲葉與杜仲皮的成分比較中草藥EJ].1987,18(3):11. [2]張康健.杜仲葉與皮有效成分含量的比較研究[J].西北林學(xué)院學(xué)報,1996,11(2):42. [3]宋麗青.杜仲葉與杜仲皮的藥理試驗[J].中草藥,1986,17(2):15. [4]王書芳,王勤,潘靜,等.吡咯啉氮氧自由基及衍生物抗大鼠不同組織脂質(zhì)過氧化損傷[J].中國藥理學(xué)通報,2001,17(4):424—427. [5]王建華,張民,甘璐,等.枸杞多糖一1對羥自由基所致小鼠肝線粒體損傷的作用[J].中國藥學(xué)雜志,2001,36(10):669. [6]田京偉,楊建雄.白藜蘆醇苷的體外抗氧化活性[J].中草藥,2001,32(10):918—920. [7]曹煒,尉亞輝,楊建雄.蜂膠對氧自由基和四氧嘧啶致小鼠肝臟損傷的保護(hù)作用[J].中草藥,2001,32(11):1013—1015. [8]馮立明,潘華珍,閔福寶,等.麥芽醇對紅細(xì)胞氧化損傷的保護(hù)作用[J].中國藥理學(xué)通報,1990,11(6):26. [9]CHANCE B,SIES H,BOVERIS A.Hydropemxide metabolism in mammalian organs[J].Physiological Reviews,1979,59(3):527—605.
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