熊果酸和齊墩果酸對(duì)胰脂肪酶活性及構(gòu)象的影響 |
發(fā)布時(shí)間:2011-06-20 信息來源:admin 發(fā)布人:admin 點(diǎn)擊次數(shù):2616 |
【摘要】 目的研究熊果酸(UA)和齊墩果酸(OA)對(duì)胰脂肪酶(LPS)活性和構(gòu)象的影響。方法采用紫外光譜法、熒光光譜法以及圓二色譜法分析UA和OA作用后LPS相應(yīng)圖譜的特征。結(jié)果UA和OA作用后LPS的活性明顯降低,紫外吸收光譜發(fā)生改變。熒光淬滅結(jié)果顯示UA作用后,LPS的熒光發(fā)生淬滅,且淬滅的機(jī)制為靜態(tài)淬滅和動(dòng)態(tài)淬滅組合的淬滅機(jī)制,而OA對(duì)LPS熒光淬滅主要為靜態(tài)淬滅;UA和OA作用后LPS的圓而色譜圖譜發(fā)生改變。結(jié)論UA和OA都可以抑制LPS的活性、影響LPS的構(gòu)象,且UA對(duì)LPS的構(gòu)象影響及抑制作用更加顯著。 【關(guān)鍵詞】 熊果酸齊墩果酸 胰脂肪酶 紫外光譜 熒光光譜 圓二色譜 脂肪酶(lipase,簡稱 LPS) 是一種特殊的酯鍵水解酶,廣泛存在于動(dòng)物組織、植物種子和微生物體中,它能催化天然底物油脂水解,產(chǎn)生脂肪酸和甘油[1]。
熊果酸(ursolic acid, UA ) 和齊墩果酸(oleanolic acid, OA )為同分異構(gòu)體,均屬于五環(huán)三萜類化合物,廣泛存在于中草藥中,且具有多種生物活性[2]。OA和UA都具有一定的降脂作用,能夠有效地降低高脂血癥小鼠的血脂[3,4],有望開發(fā)成新型降脂藥。但OA和UA降脂作用的強(qiáng)弱的比較及降脂作用機(jī)理尚未見報(bào)道。本文采用紫外光譜、熒光光譜和圓二色譜等方法,研究了UA和OA對(duì)LPS活性及構(gòu)象的影響,比較了UA和OA對(duì)LPS抑制作用的強(qiáng)弱,為探尋OA和UA降脂作用機(jī)理,將其開發(fā)為一種雙成分降脂新藥提供理論參考。 1 儀器與試劑
F-4500熒光光譜儀(日立),TU-1800紫外可見分光光度計(jì)(北京普析通用儀器公司),JASCO-J-810圓二色譜儀(日本JASCO公司)。齊墩果酸和熊果酸購自陜西森弗生物技術(shù)有限公司,胰脂肪酶購自Sigma公司;其余試劑均為國產(chǎn)分析純。 2 方法 2.1 UA,OA對(duì)LPS活性的影響 2.1.1 UA,OA對(duì)LPS的抑制作用酶活性測(cè)定采用銅皂法[5]。 2.1.2 UA,OA對(duì)LPS的抑制動(dòng)力學(xué)研究 在酶的反應(yīng)體系中分別加入不同濃度的UA和OA,改變底物橄欖油的濃度,測(cè)定酶促反應(yīng)的初速度。以Lineweaver-Burk雙倒數(shù)法作圖,并計(jì)算抑制速度常數(shù)。 2.2 UA,OA對(duì)LPS構(gòu)象的影響 2.2.1 不同濃度UA、OA對(duì)LPS的紫外吸收光譜和熒光光譜測(cè)定 取2 ml濃度為1×10-5 mol/L的LPS溶液,分別加入不同微量體積的UA和OA(1.0×10-3 mol/L)溶液,使三萜類小分子與LPS的終摩爾比分別為0/1,0.2/1,0.4/1,0.6/1,0.8/1,1/1,3/1,5/1;旌暇鶆蚝螅覝胤胖10 min,以相同濃度的小分子溶液作空白,記錄 200~300 nm的紫外吸收光譜。
以295nm為激發(fā)波長,室溫下測(cè)定300~400 nm的熒光光譜,溶液濃度及反應(yīng)條件同上述。 2.2.2 圓二色(CD)譜測(cè)定 樣品池光程為0.1 cm ,在室溫下測(cè)定波長范圍190~250 nm的CD譜。CD譜用平均殘基摩爾橢圓度表示,單位為deg ·cm2 ·mol -1 ,數(shù)據(jù)經(jīng)3次掃描取平均值。得出CD譜后, 用該儀器附帶的楊氏方法軟件計(jì)算脂肪酶的二級(jí)結(jié)構(gòu)含量。LPS濃度為1 ×10-5 mol/L,實(shí)驗(yàn)時(shí)三萜類小分子與LPS的終摩爾比為0/1,0.4/1,3/1。 3 結(jié)果與討論 3.1 UA,OA對(duì)LPS活性的影響 不同濃度的UA,OA對(duì)LPS活力的影響結(jié)果見圖1。由圖1可以看出,UA,OA對(duì)LPS都有一定的抑制作用,抑制作用隨UA,OA濃度的升高而增強(qiáng)。在相同濃度下,UA的抑制作用大于OA。 3.2 UA,OA對(duì)LPS的抑制 動(dòng)力學(xué)UA,OA對(duì)LPS的抑制作用如圖2。由圖可知隨著UA,OA濃度的升高,酶的Km值保持不變,而Vmax則隨UA,OA濃度的升高而不斷降低。因此UA、OA對(duì)LPS均屬于非競爭性抑制。
采用Dixon作圖法,以1/V對(duì)不同濃度的UA,OA作圖,可得到UA,OA的抑制常數(shù)Ki。UA,OA的Ki分別為0.6 mmol/L,0.46 mmol/L,可見抑制作用UA大于OA。 3.3 不同濃度UA,OA對(duì)LPS的紫外吸收差譜 大多數(shù)蛋白質(zhì)分子在280 nm附近有一個(gè)吸收峰,是由于色氨酸(Trp)和酪氨酸(Tyr)等芳雜環(huán)對(duì)光的吸收;同時(shí)在220 nm左右有一個(gè)由肽鍵的C=O的π-π躍遷引起的強(qiáng)吸收峰,與蛋白質(zhì)的α-螺旋含量有關(guān)[7]。
用不同濃度的UA,OA作用于LPS的紫外吸收差譜如圖3。可知LPS在270 nm和220 nm附近出現(xiàn)最大吸收峰,且隨UA、OA濃度的增加LPS在220 nm 和270 nm附近的吸收不斷增大,圖3A中最大吸收都有少許紅移。在低濃度時(shí),酶在220 nm 和270 nm附近的吸收隨濃度的增加而急劇增加,當(dāng)UA與酶的比例達(dá)到1/1后,紫外吸收增幅減慢。因此可以認(rèn)為UA與LPS的摩爾比例為1/1時(shí),具有最大紫外吸收。圖3B中OA作用后的LPS最大吸收峰發(fā)生紅移,當(dāng)OA與酶的比例達(dá)到3/1后,紫外吸收增幅明顯減慢。因此可以認(rèn)為OA與LPS的摩爾比例為3/1時(shí),具有最大紫外吸收。
從由不同濃度的UA、OA作用后LPS的紫外吸收差譜可見,LPS270nm和280nm附近的吸收主要是由于肽鍵C=O基的π-π*躍遷所引起,與蛋白質(zhì)的α-螺旋含量有關(guān)[6]。當(dāng)UA、OA濃度較低時(shí),這些小分子與LPS的結(jié)合有利于酶分子間和分子內(nèi)的團(tuán)聚作用,使包圍在LPS分子內(nèi)部的色氨酸和酪氨酸殘基的芳雜環(huán)疏水基團(tuán)裸露出來,改變了芳香族氨基酸殘基在空間結(jié)構(gòu)中所處的微環(huán)境使蛋白質(zhì)分子的構(gòu)象發(fā)生改變,α螺旋含量減少;當(dāng)小分子濃度進(jìn)一步升高時(shí),UA處理后的LPS分子發(fā)生蛋白質(zhì)肽鏈伸展現(xiàn)象,使酶分子中疏水作用略有增強(qiáng),吸收峰略增加且略有紅移[7],因此在紫外差譜中酶的最大吸收增加明顯減緩,并產(chǎn)生紅移。而OA沒有紅移現(xiàn)象,表明UA與酶的結(jié)合對(duì)酶構(gòu)象的影響較OA大。 3.4 不同濃度UA,OA對(duì)LPS的熒光光譜的影響 蛋白質(zhì)中芳香氨基酸的熒光特性可用來推測(cè)蛋白質(zhì)的溶液構(gòu)象,提供有關(guān)蛋白質(zhì)生色基團(tuán)的結(jié)構(gòu)及所處微觀環(huán)境的信息。蛋白質(zhì)分子中色氨酸(Trp)、酪氨酸(Tyr)和苯丙氨酸(Phe)具有熒光性質(zhì),此蛋白質(zhì)內(nèi)源熒光可作為探針檢測(cè)蛋白質(zhì)構(gòu)象變化。295 nm波長光激發(fā)時(shí),蛋白質(zhì)分子中的Trp殘基受到激發(fā),所產(chǎn)生熒光的強(qiáng)度和位置與這些殘基所處的微環(huán)境密切相關(guān)[8]。
由圖4可知,295 nm激發(fā)時(shí)熒光光譜的最大發(fā)射波長是340 nm,隨著UA、OA濃度的不斷增加,熒光強(qiáng)度明顯減弱, 出現(xiàn)典型的熒光猝滅現(xiàn)象,表明其與酶結(jié)合后引起蛋白質(zhì)的構(gòu)象變得疏松,局部構(gòu)象發(fā)生變化,變化后的結(jié)構(gòu)不利于酶的催化,故酶活力逐漸降低[9]。而在圖4A中,隨著UA濃度的增加,發(fā)射峰位紅移,說明LPS中發(fā)生熒光淬滅的Trp和Tyr殘基周圍的疏水性有所增加。同時(shí)出現(xiàn)了裂峰,原來341 nm處的單峰逐漸裂分為二重峰,其中一峰峰值藍(lán)移至325 nm,另一峰峰值紅移至360 nm。藍(lán)移峰最可能是LPS中Tyr殘基受UA誘導(dǎo)而終止與Trp殘基間的共振能量轉(zhuǎn)移,分裂出自身的熒光發(fā)射峰;紅移峰應(yīng)歸屬于Trp殘基[10,11],表明原來疏水環(huán)境的Trp殘基逐漸暴露在極性環(huán)境中,使蛋白質(zhì)的構(gòu)象變得疏松,酶催化活力降低 [10]。 3.5 UA,OA對(duì)LPS熒光淬滅的機(jī)理 若將UA,OA對(duì)LPS熒光的淬滅歸因于分子碰撞引起的動(dòng)態(tài)淬滅, 按照Stern - Volmer方程[12]:
F0/F=1+Kqτ0 [Q]=1+Ksv[Q] (1)
式中:F0為無淬滅劑時(shí)LPS的熒光強(qiáng)度,F(xiàn)為有淬滅劑時(shí)LPS的熒光強(qiáng)度,Kq為分子淬滅速率常數(shù),τ0為淬滅劑不存在時(shí)物質(zhì)的熒光壽命,Ksv為動(dòng)態(tài)淬滅常數(shù),[Q]為淬滅劑濃度。當(dāng)溫度為20 ℃時(shí),求出Ksv(UA)=17.19×104 (mol·L)-1(圖5)Ksv(OA)= 10.62 ×104 (mol·L)-1。生物大分子的熒光平均壽命約為10-8 s,因而可以求得Kq(UA)=17.19×1012 (mol·L)-1s-1 。Kq(OA)= 10.62 ×1012 (mol·L)-1s-1 37 ℃時(shí),求出Kq(UA)=17.02×1012 (mol·L)-1s-1 Kq(OA)=10.35×1012 (mol·L)-1s-1 。遠(yuǎn)大于各類淬滅劑對(duì)生物大分子的最大擴(kuò)散常數(shù)2.0×1010 (mol·L)-1s-1,表明UA、OA對(duì)LPS的熒光淬滅并不是由于分子擴(kuò)散和動(dòng)態(tài)碰撞引起的動(dòng)態(tài)淬滅,而可能是靜態(tài)淬滅。但從圖5可以看出當(dāng)[Q]>1.0×10-5 mol·L-1時(shí),UA的Stern-Volmer曲線開始偏向Y軸,說明存在一定的動(dòng)態(tài)淬滅效應(yīng)。因此當(dāng)淬滅劑UA濃度較低時(shí)以靜態(tài)淬滅為主, 隨著淬滅劑濃度增大, 動(dòng)態(tài)淬滅逐漸體現(xiàn)。因此,靜態(tài)淬滅和動(dòng)態(tài)淬滅是導(dǎo)致UA對(duì)LPS熒光淬滅的兩大原因,而OA對(duì)LPS熒光淬滅主要?dú)w因于靜態(tài)淬滅。 3.6 結(jié)合常數(shù)和結(jié)合位點(diǎn)數(shù)的計(jì)算 設(shè)UA、OA與LPS之間形成n個(gè)結(jié)合位點(diǎn)的復(fù)合物, 則結(jié)合常數(shù)Ka和n值可從式(2)計(jì)算得到[13]
lg[(F0-F)/F]=lgKA+nlg[Q](2)
不同溫度下求得的KA值和n值列于表1,從表1可以看出,UA、OA與LPS之間都只有一個(gè)結(jié)合位點(diǎn),具有強(qiáng)的相互作用。隨著溫度升高,產(chǎn)物的穩(wěn)定性降低,靜態(tài)淬滅常數(shù)KA減小,進(jìn)一步推斷淬滅過程為形成化合物所引起的靜態(tài)淬滅。表1 不同溫度下藥物與LPS結(jié)合常數(shù)KA和結(jié)合位點(diǎn)數(shù)(略) 3.7 不同濃度UA、OA作用后LPS的圓二色譜 蛋白質(zhì)的CD光譜178~250 nm為遠(yuǎn)紫外區(qū)CD光譜,可以反映肽鍵的圓二色性。在蛋白質(zhì)或多肽的規(guī)則二級(jí)結(jié)構(gòu)中,肽鍵是高度有規(guī)律排列的, 排列的方向性決定了肽鍵能級(jí)躍遷的分裂情況。因此具有不同二級(jí)結(jié)構(gòu)的蛋白質(zhì)或多肽所產(chǎn)生CD譜帶的位置、吸收的強(qiáng)弱都不相同[14]。
圖6為不同三萜類藥物濃度下LPS溶液的CD光譜。其中1曲線(LPS空白)顯示了典型LPS的結(jié)構(gòu),分別在206 nm和220 nm處出現(xiàn)負(fù)峰,在191 nm處出現(xiàn)正峰,隨著藥物的加入, LPS的CD光譜的負(fù)峰強(qiáng)度逐漸降低,且計(jì)算得到在UA,OA最大濃度作用下α螺旋含量分別減少了3.51%和2.86%,說明藥物分子與LPS結(jié)合后引起其微構(gòu)像的變化,使LPS肽鏈伸展,改變了LPS的二級(jí)結(jié)構(gòu),導(dǎo)致α螺旋結(jié)構(gòu)的減少[14,15]。從圖6和α螺旋含量變化可以得出相同濃度下UA比OA對(duì)酶二級(jí)結(jié)構(gòu)影響更加顯著,在紫外光譜和熒光光譜基礎(chǔ)上證實(shí)了UA對(duì)LPS構(gòu)象的影響比OA顯著。
以上實(shí)驗(yàn)結(jié)果可以看出,UA和OA都可通過非競爭性抑制作用抑制了LPS的活性;UA和OA作用后LPS的活性明顯降低,紫外吸收光譜發(fā)生改變,熒光光譜發(fā)生淬滅;UA,OA都改變了LPS的二級(jí)結(jié)構(gòu)和Trp、Tyr殘基所處的微環(huán)境,抑制了LPS的活性,從而抑制了外源脂肪的吸收[16,17],其中,與OA相比,UA對(duì)LPS的構(gòu)象影響及抑制作用更加顯著。
UA,OA均表現(xiàn)出較強(qiáng)的抑制LPS的活性,因此這兩種物質(zhì)有望開發(fā)為新型的雙成分的降脂新藥,同時(shí)省卻了同分異構(gòu)體復(fù)雜的分離純化工序,可以大大地降低原料成本。 【參考文獻(xiàn)】 [1]鄭毅,葉海梅,吳朝娟,等.脂肪酶活力測(cè)定研究進(jìn)展[J].工業(yè)微生物,2005,35(9):36. [2]相延英,楊光.中藥中齊墩果酸和熊果酸的分離測(cè)定方法[J].醫(yī)藥導(dǎo)報(bào),2003,22 (S1) :98. 。3]李貴海, 孫敬勇, 張希林.山楂降血脂有效成分的實(shí)驗(yàn)研究[J].中草藥,2002, 33(1):50. 。4]田麗婷,馬龍,堵年生,等.齊墩果酸的藥理作用研究概況[J].中國中藥雜志,2002,27(12):884. 。5]慧芳,王雅琴,劉春國.三種脂肪酶活力測(cè)定方法的比較及改進(jìn)[J].化學(xué)與生物工程,2007 , 24 (8):85. 。6]Bruno Stellmach .Bestimmungsmethoden Enzyme[M]. Beijing: China Light Industry Press , 1988:37. 。7]盛良全, 閆向陽, 徐華杰,等. 煙堿與牛血清白蛋白相互作用的光譜研究[J].光譜學(xué)與光譜分析,2007,27:306. [8]常?,黃艷,賀群.銥(IV)離子與人血丙球蛋白的作用研究[J]. 化學(xué)學(xué)報(bào),2005,63:223. 。9]劉惠君, 劉維屏, 陳愛平,等. 光譜法研究異丙甲草胺及其S-對(duì)映體與脲酶的相互作用機(jī)制[J]. 光譜學(xué)與光譜分析,2004,2:166. [10]王彥卿, 張紅梅, 張根成. 熒光光譜法研究黃藤素與牛血清白蛋白的相互作用[J]. 分析測(cè)試學(xué)報(bào),2006,25:48. 。11]劉雪鋒, 夏詠梅, 方云 ,等. 中藥黃連有效成分鹽酸小檗堿與牛血清白蛋白的相互作用[J].高等學(xué)校化學(xué)學(xué)報(bào),2004,11:2099. 。12]M.Li, G.F.Zhang, Z.G.Su. Dual gradient ion-exehange chromatograpy improved refolding yield of lysozyme[J]. J.Chromatogr. A, 2002,959:113. 。13]Daojin Li, Jingfeng Zhu, Jing Jin. Spectrophotometric studies on the interaction between nevadensin and lysozyme[J]. Journal of Photochemistry and Photobiology A: Chemistry,2007,189:114. 。14]沈瓊,黃濱,邵嘉亮.運(yùn)用圓二色譜研究酶與化合物相互作用的機(jī)理[J].中山大學(xué)學(xué)報(bào),2006, 145(14):62. 。15]王靜云,劉丹,唐乾,等.圓二色譜研究Asp44 在穩(wěn)定肌紅蛋白結(jié)構(gòu)中的作用[J].光譜學(xué)與光譜分析,2008, 128 (12):426. 。16]朱曉青,呂敬慈,霍世欣,等.荷葉生物堿對(duì)胰脂肪酶的抑制作用[J].上海大學(xué)學(xué)報(bào)(自然科學(xué)版),2007, 13(1):85. 。17]Charles W Pemble , Lynnette C Johnson1, Steven J Kridel. Crystal structure of the thioesterase domain of human fatty acid synthase inhibited by Orlistat[J]. Nature Structural & Molecular Biology,1998,14(8):704.
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